培養液按說明書講是要避光的，但從4攝氏度冰箱拿出來一起照臺，剛好溫度升上去，而且紫外線不透塑料，所以就拿去照吧。胰酶也說要4攝氏度保存，但同樣存在一個升溫的問題，尤其是胰酶的消化溫度，所以也拿去照臺。

通用型4℃冰箱推薦：澳柯瑪實驗室通用4℃冰箱，出廠預設4攝氏度，誤差正負0.1℃，具有控溫報警系統，整層擱板設計。

細胞就不要拿去照臺了，也不噴酒精，以免倒置顯微鏡下看不清楚，沾濕的瓶口也更容易沾上臟東西。照臺前，先往超凈臺噴一遍酒精，放完物品可以再噴一次。照完臺，關紫外燈，開白燈，開風機，ZUI低檔風速即可，戴上手套，手套噴酒精，操作前，先點酒精燈，再用酒精紗布擦擦臺面，擦完的干凈臺面上可以放瓶蓋，瓶蓋凹面不能向上，側放，不行的話就將瓶蓋蓋在干凈的臺面上。開小培養瓶的瓶蓋，可以手掌小魚際固定、壓住平放的培養瓶瓶身，拇指和食指擰開瓶蓋，達到單手操作的效果，擰上的時候也一樣。

滴管不用的時候夾在無名指和中指之間，保持水平，避免污染。開蓋后的培養瓶，不要豎立，往培養瓶中加液體時拿著培養瓶也是斜放。滴管的液體盡量避免沾到瓶口，因為血清的存在所以*培養基會產生氣泡，滴管不要排空就不會把滴管內的氣泡帶入培養瓶或沾在滴管口，滴管口不沾氣泡則在出瓶口時不容易沾到瓶口。滴管出瓶口的時候，要快進快出，要懸著一個念頭，念頭懸著進而注意力更集中、動作更快。

低速離心機：細胞離心應選擇較低的轉速，避免對細胞的物理損傷，個人習慣用1000r/min，一般離心5分鐘。差速離心技術的應用十分普遍，尤其是針對有生物活性的物質，如動植物病毒、各種亞細胞組分(細胞核、葉綠體、線粒體等)，以及核酸和蛋白質等生物大分子的分離、粗提和濃縮。

復蘇：先讓水浴鍋的溫度達到37攝氏度左右，從低溫區取出凍存的細胞后馬上投入水浴中。復蘇的關鍵是快速解凍。將凍存的細胞吸到離心管中，加入一定量*培養液后離心，是為了去除凍存液中的DMSO。直接吸取1ml凍存液到25平方厘米的培養瓶中，再加*培養基到5ml，則DMSO的終濃度為2%，這個濃度的DMSO還是會在一定程度上抑制細胞生長。不經過離心去除DMSO，不是說一定不可以，只是后果自負。

換液：當培養液變黃時，說明細胞生長旺盛，一定要換液，快長滿了就傳代或凍存。當培養液較臟時，比如漂浮較多死細胞，一般出現在復蘇或傳代后的第二天、以及常規生長細胞的第二三天，也要及時換液。

洗細胞：當培養瓶中出現較多死細胞、細胞碎片或其他雜質時，就要清洗一下。但注意用吸管加入PBS或生理鹽水時，要對著培養瓶側壁，以免沖刷掉瓶底的部分細胞。加入PBS或生理鹽水后，蓋上蓋子，在臺面上搖晃幾下，注意不要把液體濺起來或沾到培養瓶頂面。能用PBS洗較好，雖然PBS的主要成分是氯化鈉，但具有pH緩沖作用，用無菌生理鹽水洗細胞也可，優點是比較便宜。

消化：個人經驗是先摸時間，一勞永逸，以后對于同一種細胞到時間了就趕緊加*培養基終止消化。一般消化2分鐘就行了，在此基礎上增減消化的時間。也有人建議在倒置顯微鏡下觀察，等大部分貼壁細胞收縮后就停止消化，但個人認為這是多此一舉，而且很難把握一個度。吹打細胞要有節奏，動作要熟練，吸的時候要在液面下吸，吹的時候要對著瓶底沒液平的地方吹，吸的時候不要吸到氣體、吹的時候不要吹入液體平面下，這樣就基本不會產生氣泡。

傳代：常用1:2傳代，這樣才有足夠的細胞密度。不離心再重懸細胞，雖然避免了離心和重懸對細胞的損傷，減少了幾個步驟，減少污染，但吸掉胰酶的中和液后很容易丟失一部分細胞，甚至丟失大部分細胞，對于初學者不太適用。剛傳代的細胞，若在倒置顯微鏡下觀察到分布不均勻、有細胞團，就要及時晃勻。